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EASYspin Plus植物RNA快速提取试…

产品编号: CC9727

产品包装: 20次/50次

产品价格: 650元/1300元

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  • 产品简介
  • 使用说明
  • 产品图片

 适用范围:适用于快速提取植物组织细胞总RNA,使用独有基因组DNA清除柱技术可有效清除gDNA残留,一般不需要使用DNase消化,RNA可直接用于PCR,荧光定量PCR。

试剂盒组成、储存、稳定性:

试剂盒组成
保存
20
50
裂解液RLT
室温
20ml
50ml
裂解液RLTPlus
室温
10ml
25ml
去蛋白液RW1
室温
15ml
40ml
漂洗液RW
室温
5ml
10ml
第一次使用前按说明加指定量乙醇
RNase-free H2O
室温
10ml
10ml
PLANTaid
室温运输,4℃保存
2ml
5ml
基因组DNA清除柱和收集管
室温
20套
50套
RNase-free吸附柱RA和收集管
室温
20套
50套

本试剂盒在室温储存 6 个月不影响使用效果。
 
储存事项:
1. 所有的溶液应该是澄清的,如果环境温度低时溶液可能形成沉淀,此时不应该直接使用,可在37℃水浴加热几分钟,即可恢复澄清。
2. 不合适的储存于低温(4℃或者-20℃)会造成溶液沉淀,影响使用效果,因此运输和储存均在室温下(15℃-25℃)进行。
 
3. 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、PH 值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。
 
产品介绍:本公司独家推出 EASYspin 无苯酚、氯仿 RNA 快速提取技术基础上,又独家研发成功基因组DNA清除柱技术可以有效清除gDNA残留,得到的RNA一般不需要DNase消化,可直接用于PCR、荧光定量PCR等实验。独特的裂解液/β-巯基乙醇迅速裂解细胞和灭活细胞RNA酶,植物RNA助提剂PLANTaid 帮助结合多糖多酚并通过离心去除,然后裂解混合物用乙醇调节RNA结合吸附到基因组DNA清除柱,基因组DNA被清除而RNA被选择性洗脱滤过。滤过的RNA用乙醇调节结合条件后,RNA 在高离序盐状态下选择性吸附于离心柱内硅基质膜,再通过一系列快速的漂洗-离心的步骤,去蛋白液和漂洗液将细胞代谢物,蛋白等杂质去除,最后低盐的RNase free H20将纯净RNA从硅基质膜上洗脱。
 
产品特点:
1. 完全不使用有毒的苯酚,氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀等步骤。
2. 快速,简捷,单个样品操作一般可在30分钟内完成。
3. 独有的植物 RNA 助提剂可以有效结合多糖多酚,提高清除效果。
4. 独家研发成功基因组 DNA 清除柱技术可以有效清除gDNA残留,得到的RNA不需要DNase消化,可直接用于PCR、荧光定量PCR等实验。
5. 多次柱漂洗确保高纯度,OD260/OD280典型的比值达1.9~2.0,基本无DNA残留,可用于RT-PCR Northern-blot和各种实验。
 
注意事项:
1. 所有的离心步骤均在室温完成,使用转速可以达到13,000rpm的传统台式离心机。
2. 需要自备乙醇,β-巯基乙醇(可选),一次性注射器(可选),研钵。
3. 样品处理量绝对不要超过基因组吸附柱DA和和RNA吸附柱RA处理能力,否则造成DNA残留或产量降低。开始摸索实验条件时,如果不清楚样品DNA/RNA含量时宁可使用较少的样品处理量,将来根据样品试验情况增加或者减少处理量。
4. 裂解液RLT和RLT Plus和去蛋白液RW1中含有刺激性化合物,操作时戴乳胶手套,避免沾染皮肤,眼睛和衣服。若沾染皮肤、眼睛时,要用大量清水或者生理盐水冲洗
5. 关于DNA的微量残留:一般说来任何总 RNA 提取试剂在提取过程中无法完全避免DNA的微量残留(DNase消化也无法做到100%无残留),本公司的EASYspin Plus RNA提取产品,由于采取了本公司独特的缓冲体系和基因组DNA清除柱技术,绝大多数DNA已经被清除,不需要DNase消化,可直接用于反转录PCR和荧光定量PCR。个别特殊情况如DNA含量过于丰富造成残留或者要进行严格的mRNA表达量分析荧光定量PCR,我们建议在进行模板和引物的选择时:
1) 选用跨内含子的引物,以穿过mRNA中的连接区,这样DNA就不能作为模板参与扩增反应。
2) 选择基因组DNA和cDNA上扩增的产物大小不一样的引物对。
3) 将RNA提取物用RNase-free的DNase I 处理。本试剂盒还可以用于DNase I处理后的RNA清洁(cleanup),请联系我们索取具体操作说明书。
4) 在步骤去蛋白液RW1漂洗前,直接在吸附柱RA上进行DNase I处理。请联系我们索取具体操作说明书。
6. RNA纯度及浓度检测:
完整性:RNA可用普通琼脂糖凝胶电泳(电泳条件:胶浓度1.2%;0.5×TBE电泳缓冲液;150v,15分钟)检测完整性。由于细胞中70%-80%的RNA为rRNA,电泳后UV下应能看到非常明显的rRNA条带。动物rRNA大小分别约为5kb和2kb,分别相当于28S和18SrRNA。动物RNA样品中最大rRNA亮度应为次大rRNA亮度的1.5-2.0倍,否则表示RNA样品的降解。出现弥散片状或条带消失表明样品严重降解。
纯度:OD260/OD280比值是衡量蛋白质污染程度的指标。高质量的 RNA,OD260/OD280读数(10mMTris,pH
7.5)在1.8-2.1之间。OD260/OD280读数受测定所用溶液的pH值影响。同一个RNA样品,假定在10mM Tris,pH7.5 溶液中测出的OD260/OD280读数1.8-2.1之间,在水溶液中所测读数则可能在1.5-1.9之间,但这并不表示RNA            不纯。
浓度:取一定量的RNA提取物,用RNase-free水稀释n倍,用RNase-free水将分光光度计调零,取稀释液进行OD260,OD280测定,按照以下公式进行RNA浓度的计算:终浓度(ng/μl)= (OD260)×(稀释倍数n)×40。

操作步骤:(实验前请先阅读注意事项)

提示:
²        第一次使用前请先在漂洗液 RW 瓶加入指定量无水乙醇!
²        对于RNA酶或者多酚特别丰富植物组织:操作前在裂解液RLT和RLT Plus中加入β-巯基乙醇至终浓度1%,如1ml RLT或者RLT Plus中加入10μl β-巯基乙醇。此裂解液最好现用现配。配好的RLT或者RLT Plus 4℃可放置一个月。
 
1. 直接研磨法(推荐):
a. 新鲜植物组织称重后取100mg迅速剪成小块放入研钵(冰冻保存或者液氮保存样品可直接称重后取100mg放入研钵),加入10体积(1ml)RLT 1体积(100μl)PLANTaid室温下充分研磨成匀浆,注意应该迅速研磨让组织和裂解液RLT立刻充分接触以抑制RNA酶活性。
注:PLANTaid是提取多糖多酚次级代谢产物色素含量丰富的困难样品不可缺少成分。提取普通植物组织可以不加 PLANTaid,RNA产量可能会提高一些。
b. 将裂解物转入离心管,剧烈摇晃振荡15秒,13,000rpm离心5-10分钟,沉淀不能裂解的碎片和结合有多糖多酚的PLANTaid。
c. 取450μl裂解物上清(在不超过基因组DNA清除柱能力的情况下可以取更多的上清,这样可以提高产量)转到一个新离心管。加入上清体积一半的无水乙醇 (0.5体积),此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
d. 立刻接操作步骤项下3。
 
2. 液氮研磨法:
a. 取500μl裂解液RLT,转入1.5ml离心管中,加入50μl PLANTaid混匀备用。
b. 液氮中研磨适量植物组织成细粉后,取50mg细粉转入上述装有RLT和PLANTaid的离心管,立即用手剧烈振荡20秒,充分裂解。
在56℃温育1-3分钟有助于裂解植物,但是淀粉含量高的植物不能温育,因为提高的温度可能导致淀粉膨胀。
c. 用带钝针头的一次性1ml(配0.9mm针头)注射器抽打裂解物10次或直到得到满意匀浆结果(或者电动匀浆30秒),可以剪切 DNA,降低粘稠度和提高产量。
d. 将裂解物13,000rpm离心5-10分钟,沉淀不能裂解的碎片和结合有多糖多酚的PLANTaid。
e. 取裂解物上清(在不超过基因组DNA清除柱能力的情况下可以取更多的上清,这样可以提高产量)转到一个新离心管。加入上清体积一半的无水乙醇(0.5体积),此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
f. 立刻接操作步骤项下3。
 
3. 将混合物(每次小于700μl,多可以分两次加入)加入一个基因组清除柱中,(清除柱放入收集管中)13,000         rpm离心2分钟,弃掉废液。
确保离心后液体全部滤过去,膜上没有残留,如有必要,可以加大离心力和离心时间。
 
4. 将基因组DNA清除柱子放在一个干净2ml离心管内(不用RNAse free或者DEPC处理,一般干净的新离心管即可。也可使用 RNA 吸附柱配套的新的干净收集管),在基因组清除柱内加500μl裂解液RLT Plus,13,000 rpm离心30秒,收集滤液(RNA在滤液中),用微量移液器较精确估计滤过液体积(通常为450-500μl左右,滤过时候损失体积应该减去),加入0.5倍体积的无水乙醇,此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
 
5. 立刻将混合物(每次小于750μl,多可以分两次加入)加入一个吸附柱 RA 中,(吸附柱放入收集管中)13,000          rpm 离心1分钟,弃掉废液。
 
6. 加700μl去蛋白液RW1,室温放置1分钟,13,000rpm离心30秒,弃掉废液。
 
7. 加入 500μl漂洗液RW(请先检查是否已加入无水乙醇!),13,000rpm离心30秒,弃掉废液。加入500μl漂洗液 RW,重复一遍。
 
8. 将吸附柱RA放回空收集管中,13,000 rpm离心2分钟,尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
 
9. 取出吸附柱 RA,放入一个RNase free离心管中,根据预期RNA产量在吸附膜的中间部位加30-50μl RNase free water(事先在70-90℃水浴中加热可提高产量),室温放置1分钟,12,000rpm离心1分钟。
 
10. 如果预期RNA产量>30μg,加30-50μl RNase free water重复步骤9,合并两次洗脱液,或者使用第一次的洗脱液加回到吸附柱重复步骤一遍(如果需要RNA浓度高)。
 
11. 洗脱两遍的RNA洗脱液浓度高,分两次洗脱合并洗脱液的RNA产量比前者高15–30%,但是浓度要低,用户根据需要选择。